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柠檬酸合酶测定试剂盒 微量法

柠檬酸合酶测定试剂盒 微量法

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产品名称: 柠檬酸合酶测定试剂盒 微量法

英文名称: Micro Citrate Synthase(CS)Assay Kit

产品编号: BC1065

产品价格: 0

产品产地: 北京市通州区马驹桥联东U谷85A三

品牌商标: Solarbio

更新时间: 2024-05-06T09:37:28

使用范围: null

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产品内容: 

提取液:液体 50mL×1 瓶,-20℃保存;

试剂一:液体 5mL×1 瓶,-20℃保存;

试剂二:液体 0.6mL×1 支,-20℃保存;

试剂三:液体 40mL×1 瓶,4℃保存;

试剂四:粉剂×2 支,4℃保存,临用前加入 1mL 双蒸水,用不完的试剂仍 4℃保存;

试剂五:粉剂×4 支,-20℃保存,临用前加入 500μL 双蒸水,用不完的试剂仍-20℃保存; 试剂六:粉剂×1 支,-20℃保存,临用前加入 1.5mL 双蒸水,用不完的试剂仍-20℃保存;

产品说明: 

CS(EC 2.3.3.1)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体基质中,是三羧酸循环 第一个限速酶,是三羧酸循环主要调控位点之一。 CS 催化乙酰 CoA 和草酰乙酸产生柠檬酰辅酶 A,进一步水解产生柠檬酸;该反应促使无色的 DTNB 转变成黄色的 TNB,在 412nm 处有特征吸光值。

试验中所需的仪器和试剂: 可见分光光度计/酶标仪、低温离心机、水浴锅、可调节移液器、微量比色皿/96 孔板和蒸馏水。

操作步骤:

一、 样本前处理 组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:

1 称取约 0.1g 组织或收集 500 万细胞,加入 1mL 提取液和 10μL 试剂二,用冰浴匀浆器或研 钵匀浆。

2 将匀浆液 600g,4℃离心 5min。

3 将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 10min。

4 上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的 CS。

5 在沉淀中加入 200μL 试剂一和 2μL 试剂二,反复吹打充分混匀,用于 CS 测定。

6 柠檬酸合酶酶活即沉淀和上清液中的酶活之和。

二、测定步骤:

1、分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 412nm,蒸馏水调零。

2、试剂三置于 25℃(一般物种)或者 37℃(哺乳动物)水浴中预热 10min 左右(保证无沉淀)。

3、操作表:

在微量比色皿/96 孔板中分别加入

试剂名称(μL)

测定管

对照管

试剂三

172

186

试剂四

7

7

试剂五

7

 

样本

7

7

试剂六

7

 

将上述试剂按顺序加入 1 mL 玻璃比色皿中,加试剂六的同时开始计时,记录 412nm 波长下 10 秒时的初始吸光度 A1,之后迅速将比色皿连同反应液一起放入 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物 种)水浴中准确反应 2 分钟;迅速取出比色皿并擦干,412 nm 下记录 2 分 10 秒时的吸光度 A2,上 清液、沉淀的测定管、对照管均需测量(每个样本需测 4 管)。 计算上清液的测定管ΔA1=A2-A1,上清液对照管的ΔA1’=A2-A1,沉淀的测定管ΔA2=A2-A1, 沉淀的对照管ΔA2’=A2-A1,计算ΔA 上清=ΔA1-ΔA1’,计算ΔA 沉淀=ΔA2-ΔA2’。

 

注意事项:

1、测定过程中样本和所有试剂在冰上放置,以免变性和失活。

2、比色皿中反应液的温度必须保持 37℃或 25℃,取小烧杯一只装入一定量的 37℃或 25℃蒸馏 水,将此烧杯放入 37℃或 25℃水浴锅中。在反应过程中把比色皿连同反应液放在此烧杯中。

3、最好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以保证实验结果的准确性。

三、CS 活性计算: 

1、组织中 CS 活力的计算:

1)按样本蛋白浓度计算:

单位的定义:37℃或 25℃下每 mg 组织蛋白在反应体系中每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义 为一个酶活力单位。

CS 上清(U/mg prot)=ΔA 上清÷ε÷d×V 反总÷(Cpr 上清×V 样本)÷T=1050×ΔA 上清÷Cpr 上清 CS 沉淀(U/mg prot)=ΔA 沉淀÷ε÷d×V 反总÷(Cpr 沉淀×V 样本)÷T =1050×ΔA 沉淀÷Cpr 沉淀 CS(U/mg prot)=CS 上清+CS 沉淀=1050×ΔA 上清÷Cpr 上清+1050×ΔA 沉淀÷Cpr 沉淀。

2)按样本鲜重计算:

单位的定义:37℃或 25℃下每 g 组织在反应体系中每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义为一 个酶活力单位。 CS 上清(U/g 鲜重)=ΔA 上清÷ε÷d×V 反总÷(W×V 样本÷V 提取)÷T =1050×ΔA 上清÷W  CS 沉淀(U/g 鲜重)=ΔA 沉淀÷ε÷d×V 反总÷(W×V 样本÷V 沉淀)÷T =212×ΔA 沉淀÷W CS(U/g 鲜重)=CS 上清+CS 沉淀=1050×ΔA 上清÷W+212×ΔA 上清÷W。

2、细菌或培养细胞中 CS 活力的计算:

1)按样本蛋白浓度计算:

单位的定义:37℃或 25℃下每 mg 蛋白在反应体系中每分钟催化产生 1 nmol TNB 定义为一 个酶活力单位。 CS 上清(U/mg prot)=ΔA 上清÷ε÷d×V 反总÷(Cpr 上清×V 样本)÷T=1050×ΔA 上清÷Cpr 上清 CS 沉淀(U/mg prot)=ΔA 沉淀÷ε÷d×V 反总÷(Cpr 沉淀×V 样本)÷T=1050×ΔA 沉淀÷Cpr 沉淀 CS(U/mg prot)=CS 上清+CS 沉淀=1050×ΔA 上清÷Cpr 上清+1050×ΔA 沉淀÷Cpr 沉淀。

2)按细菌或细胞密度计算:

单位的定义:37℃或 25℃下每 1 万个细菌或细胞在反应体系中每分钟催化产生 1 nmol 5TNB 定 义为一个酶活力单位。 CS 上清(U/10 4 cell)=ΔA 上清÷ε÷d×V 反总÷(500×V 样本÷V 提取)÷T=2.1×ΔA 上清 CS 沉淀(U/10 4 cell)=ΔA 沉淀÷ε÷d×V 反总÷(500×V 样本÷V 沉淀)÷T =0.4242×ΔA 沉淀 CS(U/10 4 cell)=CS 上清+CS 沉淀=2.1×ΔA 上清+0.4242×ΔA 沉淀。

 ε:TNB 的消光系数,13.6×10 -3mL/(nmol·cm);V 反总:反应体系总体积,1mL;d:比色 皿光径,1cm;V 样本:加入的样本体积,0.035mL;V 提取:提取液体积,1mL;V 沉淀:溶 解沉淀的总体积,0.202mL;T:反应时间,2min;Cpr 上清:上清液的蛋白浓度,mg/mL;Cpr 沉淀:沉淀溶解后的蛋白浓度, mg/mL;W:样本鲜重,g。

 

注意事项

1、测定过程中样本和所有试剂在冰上放置,以免变性和失活。

2、比色皿中反应液的温度必须保持 37℃或 25℃,取小烧杯一只装入一定量的 37℃或 25℃蒸馏水, 将此烧杯放入 37℃或 25℃水浴锅中。在反应过程中把比色皿连同反应液放在此烧杯中。

3、最好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以保证实验结果的准确性。

4、用 96 孔板测定时,根据测定管数量配制测定管工作液(试剂三、四、五、六)和对照管工作液 (试剂三、四),因通过单位时间内吸光值变化计算酶活,不推荐同时测多个样本。 5、用 96 孔板做实验时,计算公式中的比色皿光径变为 0.5cm。

 

相关文献:

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