qPCR常见问题及解决方案

qPCR常见问题及解决方案

对于从事分子生物学研究的实验猿来说，RT-qPCR实验可谓是老生常谈了。看似风平浪静，只需“RNA提取-反转录-荧光定量”这些按部就班的操作，实则险象环生，一丁点的出错都有可能让我们怀疑人生。

即便如此，在CNS的召唤下我们仍旧一遍遍的重复、重复、再重复。小翊深有体会，为此呕心沥血整理出来常用的SYBR Green染料法RT-qPCR实验的几个常见问题，并给出了可能的原因和解决方案，希望大家能够顺利度过RT-qPCR大关。

RT-qPCR实验中，大家或多或少会遇到扩增曲线异常、熔解曲线异常和重复性不好的问题，可从以下几个方面对症分析。

扩增曲线异常

正常的扩增曲线一般呈S型，Ct值最好在20-30之间。异常的扩增曲线包括曲线无平台期、曲线呈锯齿状和Ct值偏大等现象。

1. Ct值偏大（如Ct值＞30）

1）模板量低或基因表达丰度低，建议增加模板量观察Ct值能否成相应倍数减少。

2）qPCR整个反应条件不适宜或引物设计不当导致扩增效率低，建议通过标准曲线确认扩增效率。

3）扩增产物过长，建议用三步法程序扩增或通过优化引物，扩增产物长度最好不超过300bp。

4）体系中可能存在抑制剂影响酶的活性，建议梯度稀释模板或重新制备纯度更高的模板。

2. 扩增曲线无法达到平台期

基因丰度低、循环数较少，建议增加循环数或选择适合低丰度基因定量的产品。

3.扩增曲线平台期锯齿状

1）RNA纯度低，建议梯度加大模板稀释倍数看优化效果或重新制备高纯度RNA重新实验。

2）仪器长时间未校准，建议定期进行仪器校准保养。

4.有熔解曲线，无扩增曲线

可能是扩增程序设置错误，未进行荧光信号搜集，建议重新实验，增加扩增程序中延伸阶段荧光信号的搜集。

5. 阴性对照有扩增

1）NTC有扩增，可能有以下两种情况：

①Ct＞35，熔解曲线Tm值＜80℃（一般正常qPCR产物，大小在100-300bp之间，熔解曲线Tm大多在80℃以上），可能是引物二聚体导致，可进一步优化引物。

②有Ct值且＜35，表示反应体系被污染，可逐步排除污染源。

2）NRC有扩增

NTC正常，NRC有Ct值，可能是RNA含有gDNA污染。建议用DNase I消化或使用含有gDNA去除的反转录试剂盒。

【注】NTC是指将H₂O代替模板的阴性对照反应；NRC是指将未反转录的RNA作为模板的阴性对照反应。

6.复孔重复性差

1）加样误差导致，建议移液器定期校准，另外可通过扩大反应体系或提前配制好预混液优化。

2）模板量低，建议提高模板量，使Ct值落在15-30之间。

3）仪器长时间未校准，建议定期进行仪器校准保养。

熔解曲线异常

熔解曲线常用来判断qPCR结果的特异性，理想的熔解曲线为单峰，异常的熔解曲线会出现杂峰、双峰、宽峰等可能的情况，下面我们来逐一分析。

1.熔解曲线出现双峰

1）双峰，较低峰Tm在80℃之前

可能存在引物二聚体,建议降低引物浓度或重新设计引物等方式优化。

2）双峰，双峰Tm在80℃以后

①引物特异性过差导致非特异性产物扩增，建议Blast检查引物特异性或重新设计引物。

②gDNA污染，可通过NRC进行确认。若NRC有Ct值，可重新制备模板。

2. 熔解曲线单峰但不尖锐

可能存在大小相近的非特异性产物，建议进行高分辨率琼脂糖电泳确认。

3.熔解曲线单峰但Tm值在80℃以前

推测未加模板，仅有引物二聚体的扩增。进行高分辨率琼脂糖电泳确认产物或重复实验。

4.有扩增曲线，无熔解曲线

可能是熔解程序设置错误，未搜集荧光信号，建议重新实验，增加熔解曲线阶段的信号搜集。

5.熔解曲线峰型杂乱

1）反应体系污染，结合NTC和NRC结果确认污染情况，建议从水，引物，酶和环境等逐一排除污染。

2）试剂暴露在强光或高温下导致试剂失效，建议用新的试剂做对比实验。

3）仪器长时间未校准，建议定期进行仪器校准保养。

4）耗材与仪器不匹配，需确认对应仪器对耗材的要求。

6.两种试剂对比，得到的Tm值不一样

可能是不同试剂的促解链成分或含量不一样，导致解链温度Tm值不一样。

以上就是小翊为大家整理的RT-qPCR实验中可能遇到的问题及相应的建议，希望对大家有所帮助